免疫組化
 
1.  其實免疫組化，我個人感覺方法和操作都不是很難，關(guān)鍵是結(jié)果出現(xiàn)異常時該如何去解決？ 我認為首先需要掌握好免疫組化實驗的原理，知道每一個操作步驟的目的，這樣你才能大膽地去改革和糾正一些錯誤的步驟，如抗體孵育條件主要是抗體濃度、溫度、時間，這三者一般是相互成反比的（相對），其中濃度是zui重要的先決條件，溫度決定反應(yīng)的速度、時間決定反應(yīng)的量。比如溫度有4 ℃、室溫、37 ℃。我推薦4 ℃*，反應(yīng)zui溫和，背景較淺；而37 ℃反應(yīng)速度較快，時間較短；室溫我不太提倡，除非你每次都把環(huán)境溫度控制在一定的范圍，否則，盡量選擇前兩者。 
 
2.  定位和定性是免疫組化zui大的優(yōu)勢。相比于其他蛋白檢測方法，免疫組化具有定位較直接準(zhǔn)確、定性靈敏度高，是定位檢測分析方法。尤其對于有些因子的轉(zhuǎn)位研究十分有用。 
 
3.  免疫組化結(jié)果定量分析的前提是高質(zhì)量的染色切片。免疫組化結(jié)果也能定量分析，但必須是背景染色淺而特異性染色較深的情況下，分析zui為準(zhǔn)確，這種原則可能也是我們?nèi)粘徃鍟r判定研究結(jié)果的*條件。 
 
4.  免疫組化實驗一定要設(shè)置陽性和陰性對照。陽性對照一般是用肯定表達這種抗原的切片來做；陰性對照一般是用PBS或非一抗替代一抗來進行反應(yīng)，其余步驟均一致。前者是排除方法和實驗系統(tǒng)有無問題；后者是排除有無一抗外的非特異性染色。 
 
5.  免疫組化技術(shù)掌握與否的鑒定標(biāo)準(zhǔn)是同一切片或不同切片中不同抗原均從摸索濃度或條件而做出優(yōu)良的染色切片。我發(fā)現(xiàn)許多研究生把網(wǎng)上或者說明書摸索的反應(yīng)條件、濃度、方法步驟，重復(fù)運用于同一性質(zhì)的切片和同一種抗體，做出來后就覺得自己已經(jīng)掌握了免疫組化方法，更換一種抗體后，居然連二抗的種屬來源都拿錯了。失敗往往促進你去思考試驗原理和過程，成功有時也讓自己很自傲。 
 
6.  免疫組化的應(yīng)用廣泛，是當(dāng)前實驗研究的zui重要方法之一。如今發(fā)SCI論文時，明顯感覺僅靠量化的數(shù)據(jù)來發(fā)文章很難，加一些形態(tài)學(xué)數(shù)據(jù)或圖片，老外十分歡迎，可能是怕你學(xué)術(shù)造假吧。當(dāng)然也不能做假陽性或假陰性結(jié)果。 
 
7.  實驗方法需要動手和動腦。經(jīng)過了反復(fù)的動手和動腦，把理論原理運用于實踐，在把實踐中發(fā)現(xiàn)的問題帶到理論知識中去解決，zui終把理論與實踐融會貫通。