模平行測序技術(shù)使得研究人員能夠?qū)蚪M進行快速的深度測序，從而從根本上改變了基因組學的發(fā)展。在本期的《自然-方法學》（Nature Methods）和《自然》（Nature）雜志兩篇的論文中Underwood和Kertesz兩個研究小組利用高通量測序技術(shù)確定了所有RNA轉(zhuǎn)錄物的二級結(jié)構(gòu)。

    在過去的一些研究中全基因組測序技術(shù)被應用于確定細胞結(jié)構(gòu)與DNA區(qū)域或mRNAs之間形成的復合物的特征。雖然這些研究提供了關(guān)于調(diào)控復合物組成的信息，然而研究人員卻無法解析這些RNAs的結(jié)構(gòu)

    zui近的研究證實RNAs在調(diào)控基因表達和基因組穩(wěn)定性中發(fā)揮了多重功能，這一課題日益引起了研究界的廣泛關(guān)注。在這些調(diào)控過程中，RNA的結(jié)構(gòu)是一個關(guān)鍵的影響因素——決定了是直接監(jiān)控外部或內(nèi)部信號，或是為反式作用因子提供特異的結(jié)合位點。

    RNA轉(zhuǎn)錄物是一種單鏈分子，當其發(fā)生自身折疊并形成Watson-Crick堿基對，可生成各種長度和不同復雜性的發(fā)夾結(jié)構(gòu)。發(fā)夾結(jié)構(gòu)是RNA中zui普通的二級結(jié)構(gòu)形式，其進一步組裝則形成了復雜的三維結(jié)構(gòu)。了解RNA二級結(jié)構(gòu)是研究人員揭示RNA活性，發(fā)現(xiàn)伴侶蛋白結(jié)合印跡及突變影響關(guān)鍵性的*步。

    對于結(jié)構(gòu)穩(wěn)定的RNAs，檢測其二級結(jié)構(gòu)zui和安全的方法就是對同源序列進行種系發(fā)生比較?？茖W家們認為同源序列可生成相似的折疊，從而維持了相同的核心螺旋數(shù)目和長度。在保守的Watson-Crick堿基對區(qū)域，Watson-Crick堿基對改變通常是兩個核苷酸遵循Watson-Crick堿基配對而同時發(fā)生變化。然而在種系發(fā)生過程中由于序列具有高度保守性此時該機制不發(fā)生作用，從而不顯示核苷酸協(xié)同變異。

    當RNA具有超過一個穩(wěn)定折疊的結(jié)構(gòu)時，種系發(fā)生比較是非常困難的。在這種情況下，研究人員只能借助電腦模擬的方法，基于實驗獲得堿基對能量集合通過zui大化堿基對數(shù)目計算出zui小的二級結(jié)構(gòu)自由能。

    在試驗中研究人員可通過化學檢測或酶檢測的方法解決這些問題。這些試驗可在缺乏或存在蛋白質(zhì)或其他配體以及各種溫度或條件下在體外或體內(nèi)完成。無論是化學檢測還是酶檢測，RNA的可接近性都是反應的重要標準。在化學檢測中，一個成分確定的化合物可通過與RNA堿基上某個精密位點或糖磷骨架發(fā)生反應，從而對RNA起作用。

    在酶檢測中，則是用一種RNA切割酶與RNA的非配對或配對區(qū)域發(fā)生反應。通過這種檢測方法（通常在引物延伸后用凝膠電泳方法檢測片段）顯示出在結(jié)構(gòu)上與化合物或酶易于接近的堿基?；衔餀z測生成的是原子水平的信息，而酶檢測主要生成螺旋和非螺旋區(qū)域的信息。這些實驗方法通常工作量大，在各種操作過程中需要多種專業(yè)知識。這樣的數(shù)據(jù)可局限性地應用于計算機折疊程序中，利用序列預測RNA的二級結(jié)構(gòu)。

    Underwood和Kertesz利用了高通量深度測序策略獲得了從細胞中抽提的RNA轉(zhuǎn)錄物復合物的二級結(jié)構(gòu)信息（圖1）。在兩篇論文中，研究人員分別獲得了來自酵母或小鼠細胞的RNAs，在確定的實驗條件下按照選擇的尺寸對其進行酶水解。酶水解的RNA產(chǎn)生了5′-磷酸基，利用接頭選擇性連接切割的片段而非帶有5′-OH片段的水解降解產(chǎn)物。在反轉(zhuǎn)錄和PCR擴增后，對生成的文庫進行深度測序。

圖1：利用深度測序進行全基因組RNA結(jié)構(gòu)檢測
圖1通過圖示概述了Kertesz（左）和Underwood（右）所用的方法。注意在Underwood的研究中，孵育對照（有或無激酶處理組）是平行完成的。

    這兩篇論文使用的方法不同之處在于所使用的酶以及數(shù)據(jù)處理的方式。Kertesz等利用了兩種酶：RNase V1，可特異識別RNA雙鏈區(qū)域；S1單鏈核酸酶（nuclease S1）,可特異性識別RNA單鏈區(qū)域。zui后的得分是RNase V1和nuclease S1從分析殘基后的核苷酸開始切割形成的片段讀數(shù)的log值。Underwood等利用了一個特異識別RNA單鏈區(qū)域的P1單鏈核酸酶（nuclease P1），并設(shè)立了兩個對照，其中一個未經(jīng)核酸酶處理以估計內(nèi)源切割保留的5′磷酸鹽的量，另一個則加入了T4連接酶檢測未保留5′磷酸鹽的切割。zui后得分是核酸酶組與對照組計數(shù)值的log值。

    酶檢測的一個重要條件是每個RNA分子僅能切割一次，因為二次切割將無法反映其天然狀態(tài)。所有類型的RNA分子切割條件很少相同，并且不能確定單擊動力學是否完成。Kertesz等，過假定堿處理導致了5′-OH片段，且這種5′-OH片段可避開深度測序分析而對非特異性切割進行間接控制。Underwood等在分析中就間接考慮了控制，因此數(shù)據(jù)在更堅實的基礎(chǔ)上（圖1）。

    Underwood等采用的方法具有的明顯優(yōu)勢，作者提供了一個軟件可將圖形序列讀值轉(zhuǎn)化為一種可被加州大學圣克魯斯分校（UCSC）基因組瀏覽程序識別的格式序列，也可通過輸入到一種RNA預測軟件中得到與實驗數(shù)據(jù)和能量zui小化計算結(jié)果相容的二級結(jié)構(gòu)結(jié)果。

    將S1或P1單鏈核苷酸與RNase V1結(jié)合使用提供了互補的信息，并對RNA結(jié)構(gòu)分析添加了限制。這些酶探針通常對空間位阻敏感，因此不會生成RNA結(jié)構(gòu)的原子信息。在未來研究人員有可能利用化學探針提供更詳細的信息，并使其在體內(nèi)容易使用

    雖然這兩種方法都有著相同的缺點即由于需從細胞中抽提RNAs并在緩沖液中復性從而有可能生成體外結(jié)果，然而它們打開了多個研究方向。其衍生的一個生物體基因組上的RNA結(jié)構(gòu)動力學完整圖像對應著廣泛的環(huán)境條件例如溫度、pH值或其他。利用平行測序，并通過在原核或真核細胞中添加各種調(diào)控因子（RNA結(jié)合蛋白、代謝產(chǎn)物或調(diào)控反式作用RNA）的方法可對全RNA的結(jié)構(gòu)變化進行監(jiān)控。這一實驗還將有助于鑒別靶向調(diào)控因子的整套原始RNA?，F(xiàn)在在活細菌中或在真核細胞無生命或有生命壓力下對對應環(huán)境變化的RNA結(jié)構(gòu)動力學進行*檢測已經(jīng)成為了可以達成的目標。而那樣的一種“RNA結(jié)構(gòu)組”將是在活生物體內(nèi)建立以RNA為基礎(chǔ)的調(diào)控和反應性網(wǎng)絡所必需的。

來源：生物通